Экспериментальный аллоксановый диабет вызывает увеличение активности сукцинатдегидрогеназы (СДГ) в печени крыс, не связанное с изменением ее изоферментного состава. Это увеличение активности СДГ коррелирует с интенсификацией транскрипции генов, кодирующих каталитический димер СДГ. Анализ метильного статуса промоторов генов, кодирующих каталитический димер СДГ, у крыс в норме и при диабете не выявил зависимости с уровнем их экспрессии. Полученные результаты бисульфитного секвенирования свидетельствуют о пассивной роли эпигенетического механизма регуляции экспрессии генов СДГ при развитии аллоксанового диабета. Большое значение в контроле транскрипционной активности генов sdha и sdhb может играть транскрипционный фактор CREB, обеспечивающий активацию глюконеогенеза при диабете.
Епринцев А.Т., Федорин Д.Н., Бакарев М.Ю. (2022) Молекулярные и биохимические исследования сукцинатдегидрогеназы в печени крыс в условиях аллоксанового диабета. Биомедицинская химия, 68(4), 272-278.
Епринцев А.Т. и др. Молекулярные и биохимические исследования сукцинатдегидрогеназы в печени крыс в условиях аллоксанового диабета // Биомедицинская химия. - 2022. - Т. 68. -N 4. - С. 272-278.
Епринцев А.Т. и др., "Молекулярные и биохимические исследования сукцинатдегидрогеназы в печени крыс в условиях аллоксанового диабета." Биомедицинская химия 68.4 (2022): 272-278.
Епринцев, А. Т., Федорин, Д. Н., Бакарев, М. Ю. (2022). Молекулярные и биохимические исследования сукцинатдегидрогеназы в печени крыс в условиях аллоксанового диабета. Биомедицинская химия, 68(4), 272-278.
Список литературы
Питерс-Хармел Э., Матур Р. (2008) Сахарный диабет: диагностика и лечение (пер. с англ.), Практика, Москва, 496 с. Scholar google search
Уоткинс П.Дж. (2006) Сахарный диабет (пер. с англ.), Бином, Москва, 134 с. Scholar google search
Radenković M., Stojanović M., Prostran M. (2016) Experimental diabetes induced by alloxan and streptozotocin: The current state of the art. J. Pharmacol. Toxicol. Methods, 78, 13-31. CrossRef Scholar google search
Епринцев А.Т., Попов В.Н., Шевченко М.Ю. (2007) Глиоксилатный цикл. Универсальный механизм адаптации? Академкнига, Москва 231 с. Scholar google search
Iverson T.M. (2012) Catalytic mechanisms of complex II enzymes: A structural perspective. Biochim Biophys Acta, 1827(5), 648-657. CrossRef Scholar google search
Махмуд Али С., Епринцев А.Т. (2012) Физико-химические и каталитические свойства сукцинатдегидрогеназы из печени крыс (Rattus rattus L.). Вестник ВГУ. Серия: Химия. Биология. Фармация, 2, 144-147. Scholar google search
Козлов В.А. (2008) Метилирование ДНК клетки и патология организма. Медицинская иммунология, 10(4-5), 307-318. CrossRef Scholar google search
Förster A.M. (2010) Analysis of DNA methylation in plants by bisulfite sequencing. Methods Mol. Biol., 631, 1-11. CrossRef Scholar google search
Lenzen S. (2008) The mechanisms of alloxan- and streptozotocin-induced diabetes. Diabetologia, 51(2), 216-226. CrossRef Scholar google search
Cimen H., Han M., Yang Y. (2010) Regulation of succinate dehydrogenase activity by SIRT3 in mammalian mitochondria. Biochemistry, 49(2), 304-311. CrossRef Scholar google search
Pollock N.L., Rai M., Simond K.S., Hesketh S.J., Teo A.C.K., Parmar M., Sridhar P., Collins R., Lee S.C., Stroud Z.N., Bakker S.E., Muench S.P., Barton C.H., Hurlbut G., Roper D.I., Smith C.J.I., Knowles T.J., Spickett C.M., East J.M., Postis V., Dafforn T.R. (2019) SMA-PAGE: A new method to examine complexes of membrane proteins using SMALP nano-encapsulation and native gel electrophoresis. Biochim. Biophys. Acta Biomembr., 1861(8), 1437-1445. CrossRef Scholar google search
Селиванова Н.В., Бакарев М.Ю., Епринцев А.Т. (2021) Выделение и идентификация генов сукцинатдегидрогеназы мембранными методами. Сорбционные и хроматографические процессы, 21(4), 584-590. CrossRef Scholar google search
Бакарев М.Ю., Быстрова Д.С., Суздалова К.И., Федорин Д.Н. (2021) Разработка олигонуклеотидных последовательностей к генам сукцинатдегидрогеназного комплекса крыс (Rattus norvegicus L.). Организация и регуляция физиолого-биохимических процессов, 23, 33-37. Scholar google search
Patterson K., Molloy L., Qu W., Clark S. (2011) DNA methylation: Bisulphite modification and analysis. J. Visualized Experiments, 56, e3170. CrossRef Scholar google search
Petersen M.C., Vatner D.F., Shulman G.I. (2017) Regulation of hepatic glucose metabolism in health and disease. Nature Reviews Endocrinology, 13(10), 572-587. CrossRef Scholar google search
Епринцев А.Т., Попов В.Н., Шевченко М.Ю. (2005) Экспрессия и регуляция ферментов глиоксилатного цикла, Центр. Черн. Книжное изд-во, Воронеж 22 c. Scholar google search
Бакарев М.Ю., Федорин Д.Н., Епринцев А.Т. (2018) Экспрессия генов SDHA и SDHB в печени крыс при аллоксановом диабете и действии фитопротектров. Организация и регуляция физиолого-биохимических процессов, 20, 31-36. Scholar google search
Comb M., Goodman H.M. (1990) CpG methylation inhibits proenkephalin gene expression and binding of the transcription factor AP-2. Nucleic Acids Res., 18, 3975-3982. CrossRef Scholar google search
Bollati V., Schwartz J., Wright R.O., Litonjua A.A., Tarantini L., Suh H.H. et al. (2009) Decline in genomic DNA methylation through aging in a cohort of elderly subjects. Mech. Ageing Dev., 130, 234-239. CrossRef Scholar google search
Benchoula K., Parhar I.S., Madhavan P., Hwa W.E. (2021) CREB nuclear transcription activity as a targeting factor in the treatment of diabetes and diabetes complications. Biochem Pharmacol., 188, 114531. CrossRef Scholar google search
